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FluorPen手持式叶绿素荧光仪

FluorPen FP110手持式叶绿素荧光仪用于实验室、温室和野外快速丈量植物叶绿素荧光参数，，，，，，具有便携性强、准确度高、性价比高等特点；；；；；；；；双键操作，，，，，，具图形显示屏，，，，，，内置锂电和数据存储，，，，，，普遍应用于研究植物的光合作用、胁迫监测、除草剂检测或突变体筛�。。。。。。。。�，，，，，还可用于生态毒理的生物检测，，，，，，如通过差别植物对土壤或水质污染的叶绿素荧光响应，，，，，，找出敏感植物作为生物传感器用于生物检测。。。。。。。。FP110配备多种叶夹型号，，，，，，用于差别的样品与研究。。。。。。。。

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应用领域

适用于光合作用研究和教学，，，，，，植物及分子生物学研究，，，，，，农业、林业，，，，，，生物手艺领域等。。。。。。。。研究内容涉及光合活性、胁迫响应、农药药效测试、突变筛选等。。。。。。。。

植物光合特征研究
光合突变体筛选与表型研究
生物和非生物胁迫的检测
植物抗胁迫能力或者易感性研究
农业和林业育种、病害检测、长势与产量评估
除草剂检测
教学

功效特点

结构紧凑、便携性强，，，，，，LED光源、检测器、控制单位集成于仅手机巨细的仪器内，，，，，，重量仅188g
功效强盛，，，，，，是叶绿素荧光手艺的高端结晶产品，，，，，，具备了大型荧光仪的所有功效，，，，，，可以丈量所有叶绿素荧光参数
内置了所有通用叶绿素荧光剖析实验程序，，，，，，包括3套荧光淬灭剖析程序、3套光响应曲线程序、OJIP快速荧光动力学曲线等
高时间区分率，，，，，，可达10万次每秒，，，，，，自动绘出OJIP曲线并给出26个OJIP–test参数
FluorPen专业软件功效强盛，，，，，，可下载、展示叶绿素荧光参数图表，，，，，，也可以通过软件直接控制仪器举行丈量
具备无人值守自动监测功效
内置蓝牙与USB双通讯�？？？？？椋�，，，，，GPS�？？？？？椋�，，，，，输出带时间戳和地理位置的叶绿素荧光参数图表
配备多种叶夹型号：牢靠叶夹式（适于实验室内暗顺应或夜间快速丈量）、疏散叶夹式（适用于野外暗顺应丈量）、探头式（透明光纤探头，，，，，，用于非接触性丈量监测或光顺应条件下的叶绿素荧光监测）、用户定制式等
可选配野外自动监测式荧光仪，，，，，，防水防尘设计

丈量程序与功效

Ft：瞬时叶绿素荧光,暗顺应完成后Ft＝F₀
QY：量子产额，，，，，，体现光系统II 的效率，，，，，，即是Fv/Fm(暗顺应状态)或ΦPSII (光顺应状态)
OJIP：快速荧光动力学曲线，，，，，，用于研究植物暗顺应后的快速荧光动态转变
NPQ：荧光淬灭动力学曲线，，，，，，用于研究植物从暗顺应到光顺应状态的荧光淬灭转变历程
LC：光响应曲线，，，，，，用于研究植物对差别光强的荧光淬灭反应
PAR：光合有用辐射，，，，，，丈量情形中植物生长可以使用的400-700nm现实光强（限PAR型号）

手艺参数

丈量参数包括F₀、Ft、Fm、Fm’、QY、QY_Ln、QY_Dn、NPQ、Qp、Rfd、PAR（限PAR型号）、Area、Mo、Sm、PI、ABS/RC等50多个叶绿素荧光参数，，，，，，及3种给光程序的光响应曲线、3种荧光淬灭曲线、OJIP曲线等
OJIP–test时间区分率为10?s（每秒10万次），，，，，，给出OJIP曲线和26个参数，，，，，，包括F₀、Fj、Fi、Fm、Fv、Vj、Vi、Fm/F₀、Fv/F₀、Fv/Fm、Mo、Area、Fix Area、Sm、Ss、N、Phi_Po、Psi_o、Phi_Eo、Phi–Do、Phi_Pav、PI_Abs、ABS/RC、TRo/RC、ETo/RC、DIo/RC等
丈量程序：Ft、QY、OJIP、NPQ1、NPQ2、NPQ3、LC1、LC2、LC3、PAR（限PAR型号）、Multi无人值守自动监测
叶夹类型：FP110/S牢靠叶夹式、FP110/D疏散叶夹式、FP110/P探头式、FP110/X用户定制式

PAR传感器（限PAR型号）：80?入射角余弦校正，，，，，，读数单位?mol(photons)/m?.s，，，，，，可显示读数，，，，，，检测规模400-700 nm
丈量光：每丈量脉冲最高0.09?mol(photons)/m?.s，，，，，，10-100%可调
光化学光：10-1000?mol(photons)/m?.s可调
饱和光：最高3000?mol(photons)/m?.s，，，，，，11-100%可调
光源：标准设置蓝光455nm，，，，，，可凭证需求配备差别波长的LED光源
检测器：PIN光电二极管，，，，，，667–750nm滤波器
尺寸大�。。。。。。。。撼阈�，，，，，手机大�。。。。。。。。�，，，，，134×65×33mm（不包括探头），，，，，，重量仅188g
数据存储：容量16Mb，，，，，，可存储149000数据点
显示与操作：图形化显示，，，，，，双键操作，，，，，，待机5分钟自动关闭
供电：2000mA可充电锂电池，，，，，，USB充电，，，，，，可一连事情48小时，，，，，，低电报警
事情条件：0–55℃，，，，，，0–95%相对湿度（无凝聚水）
存贮条件：-10–60℃，，，，，，0–95％相对湿度（无凝聚水）
通讯方法：蓝牙+USB双通讯模式，，，，，，蓝牙在20m距离最大传输速率3Mbps
GPS�？？？？？椋耗谥茫�，，，，，最高精度1.5m
软件：FluorPen1.1专用软件，，，，，，用于数据下载、剖析和图表显示，，，，，，输出Excel数据文件及荧光动力学曲线图，，，，，，适用于Windows 7及更高操作系统

操作软件与实验效果

产地：捷克

应用案例

2017年4月，，，，，，美国国家航空航天局（NASA）新一代先进植物作育器（Advanced Plant Habitat，，，，，，APH）搭载同盟号MS-04货运飞船抵达国际空间站。。。。。。。。宇航员使用FluorPen手持仪叶绿素荧光仪在其中开展植物心理学及太空食物莳植（growth of fresh food in space）的研究。。。。。。。。

参考文献

1. Singh, S., Mohan Prasad, S. & Pratap Singh, V. Additional calcium and sulfur manages hexavalent chromium toxicity in Solanum lycopersicum L. and Solanum melongena L. seedlings by involving nitric oxide. Journal of Hazardous Materials 398, 122607 (2020).

2. Ariyarathna, R. a. I. S., Weerasena, S. L. & Beneragama, C. K. Application of Polyphasic OJIP Chlorophyll Fluorescent Transient Analysis as an Indicator for Testing of Seedling Vigour of Common Bean (Phaseolus vulgaris L.). Tropical Agricultural Research 31, 106–115 (2020).

3. Prity, S. A. et al. Arbuscular mycorrhizal fungi mitigate Fe deficiency symptoms in sorghum through phytosiderophore-mediated Fe mobilization and restoration of redox status. Protoplasma (2020) doi:10.1007/s00709-020-01517-w.

4. Rahman, M. A. et al. Arbuscular Mycorrhizal Symbiosis Mitigates Iron (Fe)-Deficiency Retardation in Alfalfa (Medicago sativa L.) Through the Enhancement of Fe Accumulation and Sulfur-Assisted Antioxidant Defense. International Journal of Molecular Sciences 21, 2219 (2020).

5. Vitorino, L. C. et al. Biocontrol Potential of Sclerotinia sclerotiorum and Physiological Changes in Soybean in Response to Butia archeri Palm Rhizobacteria. Plants 9, 64 (2020).

6. Aalifar, M. et al. Blue Light Improves Vase Life of Carnation Cut Flowers Through Its Effect on the Antioxidant Defense System. Front. Plant Sci. 11, 511 (2020).

7. Muthusamy, M., Yoon, E. K., Kim, J. A., Jeong, M.-J. & Lee, S. I. Brassica Rapa SR45a Regulates Drought Tolerance via the Alternative Splicing of Target Genes. Genes 11, 182 (2020).

8. Muthusamy, M., Kim, J. Y., Yoon, E. K., Kim, J. A. & Lee, S. I. BrEXLB1, a Brassica rapa Expansin-Like B1 Gene Is Associated with Root Development, Drought Stress Response, and Seed Germination. Genes 11, 404 (2020).

9. Herritt, M. T. & Fritschi, F. B. Characterization of Photosynthetic Phenotypes and Chloroplast Ultrastructural Changes of Soybean (Glycine max) in Response to Elevated Air Temperatures. Front. Plant Sci. 11, (2020).

10.Kasampalis, D. S., Tsouvaltzis, P. & Siomos, A. S. Chlorophyll fluorescence, non-photochemical quenching and light harvesting complex as alternatives to color measurement, in classifying tomato fruit according to their maturity stage at harvest and in monitoring postharvest ripening during storage. Postharvest Biology and Technology 161, 111036 (2020).

11.Soares, J. S., Santiago, E. F. & Sorgato, J. C. Conservation of Schomburgkia crispa Lindl. (Orchidaceae) by reintroduction into a fragment of the Brazilian Cerrado. Journal for Nature Conservation 53, 125754 (2020).

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13.Chiluwal, A. et al. Deterioration of ovary plays a key role in heat stress-induced spikelet sterility in sorghum. Plant, Cell & Environment 43, 448–462 (2020).

14.Maai, E., Nishimura, K., Takisawa, R. & Nakazaki, T. Diurnal changes in chloroplast positioning and photosynthetic traits of C4 grass finger millet. Plant Production Science 0, 1–13 (2020).

15.De Micco, V. et al. Dust accumulation due to anthropogenic impact induces anatomical and photochemical changes in leaves of Centranthus ruber growing on the slope of the Vesuvius volcano. Plant Biol J 22, 93–102 (2020).

附：OJIP参数及盘算公式

Bckg = background
Fo: = F50?s; fluorescence intensity at 50 ?s
Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)
Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)
Fm: = maximal fluorescence intensity
Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)
Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)
Fm / Fo = Fm / Fo
Fv / Fo = Fv / Fo
Fv / Fm = Fv / Fm
Mo = TRo / RC - ETo / RC
Area = area between fluorescence curve and Fm
Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)
Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)
N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA
Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)
Phi_o = I - Vj
Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o
Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)
Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)
ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)
TRo / RC = Mo . (I / Vj)
ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)
DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)

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